专家论坛 | 王华:酒精性肝病的免疫调控机制及精准治疗靶点
发布时间:2026-08-29   
图片


引用本文

沈海源, 韦力萌, 左莉, 王华. 酒精性肝病的免疫调控机制及精准治疗靶点[J]. 中华肝脏病杂志, 2026, 34(8):723-731. DOI: 10.3760/cma.j.cn501113-20260319-00117.


通信作者:

王华,安徽医科大学第一附属医院肿瘤科;安徽医科大学炎症免疫性疾病安徽省实验室;抗炎免疫药物教育部重点实验室(安徽医科大学)



专 家 简 介

图片

王  华 教授


  • 主任医师,二级教授。安徽医科大学第一附属医院肿瘤内科主任;抗炎免疫药物教育部重点实验室(安徽医科大学)主任,炎症免疫性疾病安徽省实验室执行主任;安徽医科大学科技产业部部长。1999年毕业于安徽医科大学医学系临床医学专业,2005年获安徽医科大学临床药理研究所药理学博士学位;2007年至2014年在美国国立卫生研究院(NIH)酒精滥用与依赖研究所(NIAAA)肝病实验室以博士后和访问学者身份开展科学研究。主要研究方向为肝损伤炎症与修复、肿瘤免疫,及相关药物研发。目前主持青年科学基金项目(A类)、重点和科技部项目等。代表作发表在Hepatology,Journal of Hepatology,Gut等杂志,担任多种杂志的编委包括Hepatology,eGastroenterology等,获安徽省自然科学奖二等奖和安徽省青年科技奖



 摘  要 

酒精性肝病(ALD)是全球面临的重大健康挑战,尤其重症酒精性肝炎的死亡率极高。炎症在 ALD 进展中扮演核心角色,免疫细胞及其炎症介质在肝脏与肝外器官发挥的作用共同促进了该疾病的发生发展。目前尚缺乏能有效阻断 ALD 慢性进展或干预酒精相关急性肝衰竭的靶向疗法。文章阐明了免疫异质性如何驱动酒精相关性肝病发生发展并影响治疗反应的核心机制,汇总当前抗炎治疗的临床研究进展,并重点探讨了基于生物标志物指导的精准治疗等具有前景的未来方向。


酒精性肝病(alcohol liver disease,ALD)是全球范围内慢性肝病的主要病因之一,造成了重大的公共卫生问题。根据世界卫生组织数据 ,全球约有 7 500 万人存在酒精相关健康问题,每年约 300 万人死于酒精相关疾病。尽管炎症反应在 ALD 发病机制中的核心作用已得到广泛认可 ,但针对炎症的特异性治疗策略在临床试验中屡屡受挫。目前,糖皮质激素仍是少数被证实可改善重症酒精相关肝炎(severe alcohol-associated hepatitis,sAH)短期生存率的药物,但其长期获益有限,且可能伴有严重感染的风险。这种临床转化困境凸显了我们对 ALD 复杂免疫病理网络理解的局限性。近年来,单细胞 RNA 测序(single-cell RNA sequencing,scRNA-seq)、空间组学等前沿技术的应用 ,为解析 ALD 免疫异质性及细胞间交互作用提供了前所未有的探索途径。本文系统总结了 ALD 进展过程的免疫学机制 ,阐述了肝外器官功能障碍对肝脏炎症的促进作用,围绕免疫异质性如何驱动 ALD 进展并影响治疗反应,深入探讨了基于精准治疗理念的免疫治疗新策略 ,旨在为研发 ALD 免疫干预策略提供参考。



一、ALD 的肝脏免疫调控机制

(一)酒精代谢导致的直接肝损伤

肝脏是酒精代谢的主要场所,通过主要三种酶氧化途径:(1)肝细胞细胞质中的乙醇脱氢酶;(2)内质网细胞色素 P450 酶 2E1 酶系统;(3)过氧化物酶体中的过氧化氢酶。这些过程产生的乙醛和活性氧(reactive oxygen species,ROS)是肝细胞损伤的主要始动因素。


受损的肝细胞释放多种损伤相关分子模式(danger-associated molecular patterns,DAMPs),进而通过激活模式识别受体 ,介导固有免疫细胞活化。同时,凋亡肝细胞被库普弗细胞(Kupffer cells,KCs)吞噬后,可促使巨噬细胞从促炎表型向修复表型转化,并分泌白细胞介素(interleukin,IL)-10 等抗炎因子,影响炎症反应的消退。在这一过程中 ,IL-10 作为关键的抗炎介质,主要通过抑制 KCs 释放肿瘤坏死因子-α(tumor necrosis factor-α,TNF-α)及超氧化物,从而在早期限制免疫损伤并为后续组织修复创造条件。


(二)固有免疫细胞的激活与功能失调

1. 巨噬细胞的异质性及其双重角色:肝脏巨噬细胞主要包括自我更新的驻留 KCs 和循环单核细胞来源的巨噬细胞(monocyte-derived macrophages,MoMFs)。在稳态下,KCs 作为第一道防线清除门静脉来源的病原体和内毒素。长期乙醇摄入破坏肠道屏障,导致脂多糖(lipopolysaccharide,LPS)转位至肝脏,通过 Toll 样受体(toll-like receptor,TLR)4 激活 KCs 的髓样分化因子 88 依赖和非依赖通路,诱导 TNF-α、IL-1β、IL-6 和 CC 趋化因子配体-2 等炎症因子大量释放。这些因子直接损伤肝细胞,还可募集 MoMFs 浸润,其在肝内分化为促炎表型,表现为吞噬功能降低而对 LPS 刺激反应增强,从而维持炎症微环境。尤其是,巨噬细胞在 ALD 中表现出显著异质性。scRNA-seq 研究表明,ALD 中 MoMFs 的淋巴细胞抗原 6 复合体 C(lymphocyte antigen 6 complex locus C,Ly6C)阳性亚群促进损伤,而 Ly6C 阴性亚群则参与组织修复。这种功能可塑性提示,靶向特定巨噬细胞亚群而非全面抑制可能更具治疗价值。因此,巨噬细胞并非单纯的促炎细胞,而是在不同疾病阶段呈现促炎、免疫调节和组织修复等多种状态。ALD 患者中不同巨噬细胞亚群比例的差异,可能解释了部分患者对 C-C 趋化因子受体(C-C motif chemokine receptor,CCR)2/CCR5 阻断 、髓系细胞触发受体(triggering receptor expressed on myeloid cells,TREM)2 反应不一致的原因。


2. 中性粒细胞的从促炎损伤到免疫抑制:中性粒细胞浸润是 sAH 的组织学标志。乙醇通过 CXC 趋化因子配体(C-X-C motif chemokine ligand,CXCL)1、CXCL2 和 IL-8 等趋化因子招募中性粒细胞至肝脏。巨噬细胞分化抗原 1 与肝窦内皮细胞表面的细胞间黏附分子−1 相互作用介导其跨内皮迁移。激活的中性粒细胞通过释放 ROS、蛋白酶和中性粒细胞胞外诱捕网(neutrophil extracellular traps,NETs)直接损伤肝细胞。


最新研究揭示了中性粒细胞的异质性。高密度中性粒细胞(high-density neutrophils,HDNs)表现为活化表型,产生大量 ROS 和 NETs;而低密度中性粒细胞(low-density neutrophils,LDNs)则呈现功能耗竭状态,吞噬能力下降。sAH 患者肝脏中蓄积的IL-8⁺中性粒细胞通过 p38 丝裂原活化蛋白激酶通路维持自分泌 IL-8 产生,形成正向反馈环路驱动不可控的炎症反应。上述提示,中性粒细胞的优势型炎症可能代表 sAH 中一种具有独立预后意义的免疫亚型。对于此类患者,靶向 IL-8-CXCR1/2 轴 、NETs 形成或中性粒细胞氧化应激,可能较广谱抗炎治疗更具针对性。


3. 其他固有淋巴细胞:黏膜相关恒定 T 细胞在 sAH 患者外周血中显著耗竭且功能受损,导致抗细菌免疫缺陷。不变自然杀伤 T 细胞通过 IL-1β 激活促进中性粒细胞浸润,而自然杀伤(natural kill,NK)细胞则通过分泌干扰素(interferon,IFN)-γ 抑制肝星状细胞(hepatic stellate cells,HSCs)活化。醇长期暴露导致 NK 细胞凋亡,同时上调 1 型固有淋巴细胞,进而促进 IL-17A 表达,加重炎症和脂肪变性。这些细胞亚群的动态平衡失调共同塑造了 ALD 的免疫微环境。


(三)适应性免疫反应的参与

尽管固有免疫在 ALD 早期起主导作用,但适应性免疫也发挥了重要作用。sAH 患者肝组织分化簇(cluster of differentiation,CD)3⁺T 细胞浸润显著,循环 T 细胞表达激活标志物 CD69 和 CD38,但 IFN-γ 产生能力下降。辅助性 T(T helper,Th)17 细胞通过 IL-17 募集中性粒细胞并激活 HSCs,促进纤维化。CD8⁺T 细胞在 ALD 患者十二指肠中选择性耗竭,导致肠道屏障功能受损,而肝脏中 CD8⁺T 细胞则异常聚集,这种肝-肠免疫分布失衡加剧疾病进展。


B 细胞在 ALD 发生发展过程中具有双重免疫调节作用。一方面,乙醇代谢产物形成的抗原表位可激活 B 细胞产生抗体,形成免疫复合物沉积于肝细胞膜,通过补体活化介导肝细胞损伤;另一方面,B 细胞分泌肝脏免疫球蛋白 A 可清除肠道抗原,发挥保护作用。


(四)细胞因子与趋化因子网络

ALD 中细胞因子网络呈现复杂的促炎与抗炎失衡状态。TNF-α 在 sAH 患者血清和肝脏中升高,与疾病严重程度相关,但抗 TNF-α 临床试验因增加感染风险而失败。IL-1β 通过 NOD 样受体热蛋白结构域相关蛋白 3(NOD-like receptor family pyrin domain containing 3,NLRP3)炎症小体活化驱动炎症,但 IL-1 受体拮抗剂(anakinra)临床试验未显示明确获益。IL-8 和 CXCL1 是中性粒细胞募集的关键介质,其水平与 sAH 短期病死率密切相关。IL-17A 通过促进 HSCs 增殖和胶原合成加速纤维化。此外,转化生长因子-β(transforming growth factor-beta,TGF-β)在 ALD 中主要表现为促纤维化作用,其通过驱动胶原沉积,尽管其在早期具有一定的限制免疫过度活化的作用,但在慢性进展阶段其促损伤作用更为显著。


IL-6 在 ALD 中具有双重生物学作用。IL-6 既作为促炎因子参与细胞因子风暴,又可通过激活信号转导与转录激活因子 3(signal transducer and activator of transcription 3,STAT3)信号通路促进肝细胞再生和抗氧化防御。IL-22 是肝细胞保护因子,通过激活 STAT3 上调血红素氧合酶−1 等基因表达,发挥抗氧化、抗凋亡和促再生作用。尤其是,IL-22R1 分布具有高度特异性,仅表达于肝细胞、肠道上皮细胞等组织细胞表面,而不表达于造血来源的免疫细胞。这一空间分布特征使得 IL-22 能够在靶向促进受损肝细胞修复的同时,避免对全身免疫系统产生广泛的抑制副作用,为其作为高安全性的精准治疗靶点奠定了重要的机制基础。重组人 IL-22-Fc 融合蛋白 F-652 在Ⅱ期临床试验中显示出良好的安全性和疗效。IL-10 作为抗炎细胞因子,通过抑制巨噬细胞活化减轻肝损伤。表 1 为对 ALD 中的关键细胞因子与趋化因子的作用以及临床研究进展。


图片




二 、肝外器官参与 ALD 的炎症调控

除肝内免疫细胞外,肠道、脂肪组织和神经系统等肝外器官也通过微生物产物、代谢因子和神经免疫信号影响肝脏炎症模式。这些肝外因素并非单纯作为背景因素存在,而是参与塑造 ALD 患者不同的免疫表型,进而影响疾病进展和治疗响应。


(一)肠-肝轴:炎症的启动者

肠道与肝脏通过门静脉系统解剖相连,构成肠-肝轴。长期摄入乙醇导致肠道菌群失调,同时导致紧密连接蛋白表达下调,损害肠道屏障完整性肠道来源的病原相关分子模式通过门静脉进入肝脏,激活 KCs 和其他免疫细胞。LPS 通过 TLR4 诱导 KCs 产生 TNF-α 和 IL-1β,而 β-葡聚糖通过 C 型凝集素受体 Dectin-1 激活 NLRP3 炎症小体。肠道真菌白色念珠菌的过度定植与 ALD 严重程度相关,其通过 Th17 细胞迁移至肝脏放大炎症反应。


(二)脂肪组织:代谢与炎症的交汇点

长期饮酒诱导脂肪细胞凋亡和脂解增强,释放大量游离脂肪酸(non-esterified fatty acids,NEFA)和促炎细胞因子。饱和 NEFA 直接激活髓系细胞,促进细胞因子释放和内皮黏附。TNF-α 从脂肪组织释放后诱导肝细胞凋亡,并通过核因子 - κB 和 c-Jun 氨基末端激酶通路加剧炎症。


脂肪因子在 ALD 中呈现失衡状态。脂联素是最丰富的脂肪因子,通过脂联素受体发挥抗炎和抗纤维化作用,但乙醇抑制了分泌,损害肝脏脂质代谢。相反,瘦素水平在酒精性肝硬化中升高,通过激活 HSCs 促进纤维化。这种脂肪组织-肝脏代谢对话构成了 ALD 进展的重要驱动因素。


(三)神经-肝轴:中枢调控与免疫调节

乙醇对中枢神经系统的毒性作用不仅导致神经退行性变和成瘾行为,还通过神经内分泌和神经免疫途径影响肝脏炎症。迷走神经释放的乙酰胆碱通过 KCs 表面的 α7 烟碱型乙酰胆碱受体抑制 TNF-α 合成,构成胆碱能抗炎通路。多项动物研究证据表明,迷走神经信号可显著降低化学性肝损伤中的促炎细胞因子水平并减轻肝组织损伤,交感神经系统通过作用于 HSCs 产生促炎、促纤维化的作用。由于乙醇能够削弱神经内分泌系统对机体的调控作用,神经-肝轴对 ALD 可能有潜在的调控机制,值得进一步探究。以上揭示了多器官交互网络在 ALD 中的重要性,为开发神经-免疫-肝脏联合干预策略提供了理论基础(图 1)。


图片




新兴免疫治疗方法

(一)靶向细胞因子和炎症信号通路

1.IL-22:组织修复的守护者:IL-22 因其独特的作用机制成为有潜力的治疗靶点,已在早期临床阶段。IL-22R1 仅表达于上皮细胞,免疫系统无此受体,因此 IL-22 治疗可避免免疫抑制副作用。重组人 IL-22-Fc 融合蛋白(F-652)在 sAH 患者的 Ib/IIa 期临床试验中显示具有良好耐受性,可显著降低终末期肝病模型评分和炎症标志物,提高再生标志物水平。此外,工程菌在肠道局部产生 IL-22 可诱导再生胰岛衍生蛋白 3γ 表达,增强黏膜防御,减少细菌转位。


2. 阻断 IL-8 自分泌环路:sAH 肝脏中 IL-8⁺中性粒细胞可开辟精准治疗的新途径,目前处于临床前阶段。由于这些细胞通过自分泌/旁分泌维持不可控的炎症循环,研究表明,CXCR1/2 拮抗剂可减少中性粒细胞浸润和肝损伤。鉴于 IL-8⁺中性粒细胞是 sAH 特异性驱动因素,靶向这一亚群可能实现疾病特异性干预而不影响其他肝病。


3. 调节 IL-17 和 IL-1β 通路:阻断 IL-17 信号不仅动物实验中减轻肝损伤,还能减少小鼠的强迫性饮酒行为[30],提示其同时作用于肝脏和大脑。IL-1β在 ALD 中同样发挥显著促炎作用 ,然而其抑制剂(anakinra 和 canakinumab)的临床试验未显示生存获益,可能与 IL-1β 在急性期的修复作用有关,需谨慎选择干预时机。


(二)靶向免疫细胞功能

1. 巨噬细胞极化调节:鉴于巨噬细胞的双重角色,诱导其向抗炎/修复表型转化是合理策略,现已有Ⅲ期临床试验。TREM2 激动剂可促进代谢相关脂肪性肝炎(metabolic associated steatohepatitis,MASH)相关巨噬细胞的保护性功能。同时 ,在 ALD 特异性临床前模型中,研究也发现通过调节特定的内质网应激途径,能够有效驱动 KCs 向抗炎表型极化,从而减轻酒精诱导的肝脏炎症。另一项研究表明,上调小鼠巨噬细胞中的含 V 组和免疫球蛋白结构域 4 受体表达,能够抑制环状 GMP-AMP 合成酶-干扰素基因刺激因子通路抑制肝脏的炎症级联反应,调节巨噬细胞极化,减少肝脂肪变和肝损伤。CCR2/CCR5 双重拮抗剂 cenicriviroc 在临床前模型中有效,但 MASH Ⅲ 期临床试验未达终点,其在 ALD 中的效果仍需验证。


2. 中性粒细胞异质性靶向:针对 HDNs 和 LDNs 的不同功能,选择性抑制 HDNs 的 NETs 形成或增强 LDNs 的清除效率可能改善预后。在机制研究中,Bruton 酪氨酸激酶抑制剂可调节中性粒细胞生成和活化,减轻 ALD。miR-223 或中性粒细胞胞质因子 1 抑制剂可减少 ROS 产生,保护肝细胞。


3. T 细胞功能恢复:程序性细胞死亡蛋白−1 和 T 细胞免疫球蛋白黏蛋白-3 阻断可恢复 sAH 患者 T 细胞的 IFN-γ 产生能力,但需警惕过度免疫激活。CD8⁺T 细胞的肠内耗竭与肝内蓄积提示,纠正肠-肝免疫失衡可能是 ALD 治疗新方向。


(三)益生菌及其相关疗法

多项临床试验正在评估益生菌在 sAH 中的疗效。鼠李糖乳杆菌 GG 株、植物乳杆菌 ZY08 等制剂通过增加短链脂肪酸、强化紧密连接和调节免疫反应在 ALD 中发挥保护作用作用。粪菌移植(fecal microbiota transplantation,FMT)旨在全面重建健康的肠道菌群。 多项 Ⅱ 期试验(NCT04758806,NCT03091010)的初步数据显示,FMT 可改善 ALD 中的内毒素血症和系统性炎症,但需解决供体筛选、长期稳定性和潜在感染风险等问题。噬菌体靶向疗法提供了更精准的微生物干预。针对致病性粪肠球菌的噬菌体疗法可显著减轻小鼠和患者的ALD,为精准清除有害菌提供了早期临床范例。


(四)抗氧化与抗应激治疗

N-乙酰半胱氨酸(N-acetylcysteine,NAC)和S-腺苷甲硫氨酸(S-adenosylmethionine,SAMe)治疗逻辑主要在于恢复肝细胞谷胱甘肽水平、减轻氧化应激损伤。尽管 NAC 联合泼尼松未能改善患者6 个月生存率(NCT00863785),SAMe 的 Ⅳ 期试验(NCT02024295)仍在进行中。未来,靶向线粒体功能障碍和内质网应激的新型抗氧化剂值得探索。


(五)精准医学与多靶点联合策略

ALD 患者炎症异质性是单靶点治疗失败的重要原因。基于 scRNA-seq 和蛋白质组学的患者分层可实现精准干预。在未来的临床转化中,利用生物标志物来指导靶向药物的选择,将是实现 ALD 个体化精准治疗的关键。例如,高中性粒细胞/低 CD8⁺T 细胞表型与更严重的肝损伤相关,外周血 IL-8⁺中性粒细胞比例较高可能适合抗 IL-8 治疗;而巨噬细胞主导型可能受益于 CCR2/CCR5 拮抗剂。联合治疗策略正在兴起。粒细胞集落刺激因子与 TLR4 抑制剂 TAK-242 联用可同时促进再生和抑制炎症。IL-22 与抗生素或益生菌联用可能协同增强肠道和肝脏保护。IL-1RA 联合锌剂在 90 d 生存率上优于泼尼松。




四、总结与展望

ALD 的发生发展并非由单一炎症通路驱动,而是由肝内免疫细胞异质性、细胞因子网络失衡及肝外器官互作共同塑造的动态过程。免疫异质性不仅决定了患者疾病进展速度和临床表型,也可能是既往多种单靶点抗炎治疗失败的重要原因。固有与适应性免疫系统的失衡、复杂的细胞因子网络以及肝外器官(肠、脂肪、神经 )的交互作用共同构成了 ALD 的病理基础。尽管当前多项靶向干预仍停留在临床前或早期临床阶段,但以精准治疗为导向,结合证据层级审慎评估,针对特定免疫细胞亚群(如IL-8⁺中性粒细胞)和关键信号分子(如具备受体特异性的 IL-22)开展多靶点联合干预,将代表 ALD 未来最具临床潜力的治疗方向。


近年来,对 ALD 免疫机制的理解已取得突破性进展。然而,炎症在 ALD 中的双重作用使得简单的抗炎策略在临床试验中屡屡失败。现有治疗困境的核心在于:动物模型仅能模拟轻中度 ALD,无法重现人类 sAH 的剧烈炎症;患者免疫异质性高,单一疗法难以普遍有效;缺乏可靠的生物标志物指导患者分层 ;忽视了肝外器官在疾病进展中的协同作用。未来研究需聚焦于:(1)建立新型临床前模型:开发更能模拟人类 sAH 严重程度的动物模型,整合肠道真菌、细菌和病毒组分,实现多器官病理生理的忠实再现。(2)深化单细胞与空间分辨率研究:利用 scRNA-seq 和空间转录组学解析肝脏免疫微环境的时空动态变化,鉴定疾病特异性细胞状态和相互作用枢纽。(3)推动精准医学实践:基于免疫表型、遗传背景和微生物组特征的患者分层,开发伴随诊断技术,实现“按需施治”。(4)探索多靶点联合干预:针对跨器官交互网络设计联合治疗方案,如 IL-22 修复剂+益生菌调控肠屏障+神经调节剂减少成瘾,协同阻断疾病进展;优化 FMT 和噬菌体疗法,探索工程菌在肠道局部产生治疗性分子。(5)开发靶向递送系统:利用纳米技术实现药物在肝脏或特定细胞类型的精准递送,减少系统性副作用。


基于免疫异质性的患者分层和多靶点联合干预,可能是提高 ALD 治疗效果并实现临床转化的关键方向。随着对 ALD 免疫网络认识的不断深化和治疗策略的创新,我们有望实现从传统的通用经验治疗向基于生物标志物的精准免疫调控这一模式转变,为 ALD 这一全球健康威胁提供更有效、更安全的解决方案。




参考文献

[1] World Health Organization. Global status report on alcohol and health 2018[EB/OL]. [2026-02-14]. https://www.who.int/publications/i/item/9789241565639.


[2] Louvet A, Thursz MR, Kim DJ, et al. Corticosteroids reduce risk of death within 28 days for patients with severe alcoholic hepatitis, compared with pentoxifylline or placebo-a meta-analysis of individual data from controlled trials[J].Gastroenterology, 2018, 155(2): 458-468. e8. DOI: 10.1053/j.gastro.2018.05.011.


[3] Lin P, Yan X, Jing S, et al. Single-cell and spatially resolved transcriptomics for liver biology[J]. Hepatology, 2024, 80(3):698-720. DOI: 10.1097/HEP.0000000000000387.


[4] Jiang Y, Zhang T, Kusumanchi P, et al. Alcohol metabolizing enzymes, microsomal ethanol oxidizing system, cytochrome P450 2E1, catalase, and aldehyde dehydrogenase in alcohol-associated liver disease[J]. Biomedicines, 2020, 8(3):50. DOI: 10.3390/biomedicines8030050.


[5] Ge X, Antoine DJ, Lu Y, et al. High mobility group box-1(HMGB1) participates in the pathogenesis of alcoholic liver disease (ALD)[J]. J Biol Chem, 2014, 289(33):22672-22691.DOI: 10.1074/jbc.M114.552141.


[6] Zhang M, Xu S, Han Y, et al. Apoptotic cells attenuate fulminant hepatitis by priming Kupffer cells to produce interleukin-10 through membrane-bound TGF-β[J].Hepatology, 2011, 53(1): 306-316. DOI: 10.1002/hep.24029.


[7] 叶红球, 卿笃信 . 酒精性肝病中免疫机制的研究进展[J]. 国际消化病杂志, 2011, 31(5): 283-286.


[8] Peiseler M, Araujo David B, Zindel J, et al. Kupffer cell-like syncytia replenish resident macrophage function in the fibrotic liver[J]. Science, 2023, 381(6662):eabq5202. DOI: 10.1126/science.abq5202.


[9] 刘睿茜, 刘金芳, 徐平 . 肝纤维化发生和发展过程中肝脏巨噬细胞组成及其作用机制的研究进展[J]. 中华肝脏病杂志,2025, 33(2): 198-204. DOI: 10.3760/cma.j.cn501113-20240103-00006.


[10] Gao B, Ahmad MF, Nagy LE, et al. Inflammatory pathways in alcoholic steatohepatitis[J]. J Hepatol, 2019, 70(2):249-259.DOI: 10.1016/j.jhep.2018.10.023.


[11] Guilliams M, Bonnardel J, Haest B, et al. Spatial proteogenomics reveals distinct and evolutionarily conserved hepatic macrophage niches[J]. Cell, 2022, 185(2):379-396.e38. DOI: 10.1016/j.cell.2021.12.018.


[12] Wang M, You Q, Lor K, et al. Chronic alcohol ingestion modulates hepatic macrophage populations and functions in mice[J]. J Leukoc Biol, 2014, 96(4):657-665. DOI: 10.1189/jlb.6A0114-004RR.


[13] Roh YS, Zhang B, Loomba R, et al. TLR2 and TLR9 contribute to alcohol-mediated liver injury through induction of CXCL1 and neutrophil infiltration[J]. Am J Physiol Gastrointest Liver Physiol, 2015, 309(1):G31-41. DOI:10.1152/ajpgi.00031.2015.


[14] Xu H, Wu Z, Qin J, et al. Stressed hepatocyte sustains alcohol-associated hepatitis progression by producing leukocyte cell-derived chemotaxin 2[J]. Gut, 2025, 74(8):1321-1334. DOI: 10.1136/gutjnl-2024-334318.


[15] Jaeschke H. Neutrophil-mediated tissue injury in alcoholic hepatitis[J]. Alcohol, 2002, 27(1):23-27. DOI: 10.1016/s0741-8329(02)00200-8.


[16] Cho Y, Bukong TN, Tornai D, et al. Neutrophil extracellular traps contribute to liver damage and increase defective low-density neutrophils in alcohol-associated hepatitis[J]. J Hepatol, 2023, 78(1):28-44. DOI: 10.1016/j.jhep.2022.08.029.


[17] Guan Y, Peiffer B, Feng D, et al. IL-8+ neutrophils drive inexorable inflammation in severe alcohol-associated hepatitis[J]. J Clin Invest, 2024, 134(9):e178616. DOI: 10.1172/

JCI178616.


[18] Riva A, Patel V, Kurioka A, et al. Mucosa-associated invariant T cells link intestinal immunity with antibacterial immune defects in alcoholic liver disease[J]. Gut, 2018, 67(5):918-930. DOI: 10.1136/gutjnl-2017-314458.


[19] Cui K, Yan G, Xu C, et al. Invariant NKT cells promote alcohol-induced steatohepatitis through interleukin-1β in mice[J]. J Hepatol, 2015, 62(6):1311-1318. DOI: 10.1016/j.jhep.2014.12.027.


[20] Radaeva S, Sun R, Jaruga B, et al. Natural killer cells ameliorate liver fibrosis by killing activated stellate cells in NKG 2D-dependent and tumor necrosis factor-related apoptosis-inducing ligand-dependent manners[J]. Gastroenterology, 2006, 130(2):435-452. DOI: 10.1053/j.gastro.2005.10.055.


[21] Cheng C, Zhang Q, Li Y, et al. Interplay between liver type 1 innate lymphoid cells and NK cells drives the development of alcoholic steatohepatitis[J]. Cell Mol Gastroenterol Hepatol,2023, 15(1): 261-274. DOI: 10.1016/j.jcmgh.2022.09.010.


[22] Markwick LJL, Riva A, Ryan JM, et al. Blockade of PD1 and TIM3 restores innate and adaptive immunity in patients with acute alcoholic hepatitis[J]. Gastroenterology, 2015, 148(3):591-602.e10. DOI: 10.1053/j.gastro.2014.11.041.


[23] Meng F, Wang K, Aoyama T, et al. Interleukin-17 signaling in inflammatory, kupffer cells, and hepatic stellate cells exacerbates liver fibrosis in mice[J]. Gastroenterology, 2012,143(3):765-776.e3. DOI: 10.1053/j.gastro.2012.05.049.


[24] Maccioni L, Guan Y, Kim M, et al. Opposite regulation of intestinal and intrahepatic CD8+ T cells controls alcohol-associated liver disease progression[J]. Gut, 2025,74(8):1308-1320. DOI: 10.1136/gutjnl-2024-334412.


[25] Ahmadi AR, Song G, Gao T, et al. Discovery and characterization of cross-reactive intrahepatic antibodies in severe alcoholic hepatitis[J]. eLife, 2023, 12: RP86678. DOI:10.7554/eLife.86678.


[26] Moro-Sibilot L, Blanc P, Taillardet M, et al. Mouse and human liver contain immunoglobulin a-secreting cells originating from peyer's patches and directed against intestinal antigens[J]. Gastroenterology, 2016, 151(2):311-323. DOI: 10.1053/j.gastro.2016.04.014.


[27] Boetticher NC, Peine CJ, Kwo P, et al. A randomized,double-blinded, placebo-controlled multicenter trial of etanercept in the treatment of alcoholic hepatitis[J]. Gastroenterology, 2008, 135(6):1953-1960. DOI: 10.1053/j.gastro.2008.08.057.


[28] Gawrieh S, Dasarathy S, Tu W, et al. Randomized trial of anakinra plus zinc vs. prednisone for severe alcohol-associated hepatitis[J]. J Hepatol, 2024, 80(5): 684-693. DOI: 10.1016/j.jhep.2024.01.031.


[29] Patel OP, Noor MT, Kumar R, et al. Serum interleukin 8 and 12 levels predict severity and mortality in patients with alcoholic hepatitis[J]. Indian J Gastroenterol Off J Indian Soc Gastroenterol, 2015, 34(3): 209-215. DOI: 10.1007/s12664-015-0565-4.


[30] Xu J, Ma HY, Liu X, et al. Blockade of IL-17 signaling reverses alcohol-induced liver injury and excessive alcohol drinking in mice[J]. JCI Insight, 2020, 5(3): e131277, 131277.DOI: 10.1172/jci.insight.131277.


[31] Dewidar B, Meyer C, Dooley S, et al. TGF- β in hepatic stellate cell activation and liver fibrogenesis-updated 2019[J].Cells, 2019, 8(11): 1419. DOI: 10.3390/cells8111419.


[32] El-Assal O, Hong F, Kim WH, et al. IL-6-deficient mice are susceptible to ethanol-induced hepatic steatosis:IL-6 protects against ethanol-induced oxidative stress and mitochondrial permeability transition in the liver[J]. Cell Mol Immunol,2004, 1(3): 205-211.


[33] Kong X, Feng D, Mathews S, et al. Hepatoprotective and anti-fibrotic functions of interleukin-22:therapeutic potential for the treatment of alcoholic liver disease[J]. J Gastroenterol Hepatol, 2013, 28 Suppl 1(01):56-60. DOI: 10.1111/jgh.12032.


[34] Sabat R, Ouyang W, Wolk K. Therapeutic opportunities of the IL-22-IL-22R1 system[J]. Nat Rev Drug Discov, 2014, 13(1):21-38. DOI: 10.1038/nrd4176.


[35] Arab JP, Sehrawat TS, Simonetto DA, et al. An open-label,dose-escalation study to assess the safety and efficacy of IL-22 agonist F-652 in patients with alcohol-associated

hepatitis[J]. Hepatology, 2020, 72(2):441-453. DOI: 10.1002/hep.31046.


[36] Miller AM, Horiguchi N, Jeong WI, et al. Molecular mechanisms of alcoholic liver disease:innate immunity and cytokines[J]. Alcohol Clin Exp Res, 2011, 35(5):787-793. DOI:10.1111/j.1530-0277.2010.01399.x.


[37] Schwabe RF, Brenner DA. Mechanisms of liver injury. I.TNF-alpha-induced liver injury: role of IKK, JNK, and ROS pathways[J]. Am J Physiol Gastrointest Liver Physiol, 2006,290(4): G583-G589. DOI: 10.1152/ajpgi.00422.2005.


[38] 朱先茹, 任锋 . 肝衰竭背景下肝脏再生的分子机制及其治疗潜力[J]. 临床肝胆病杂志, 2025, 41(12): 2661-2666.


[39] 崔丽娜, 郑小红, 余嘉豪, 等 . Cxcl12-cxcr4/cxcr7 信号轴在肝再生和肝纤维化中的作用[J]. 中华肝脏病杂志, 2021, 29(9):901-903. DOI: 10.3760/cma.j.cn501113-20200721-00403.


[40] Shen H, Liangpunsakul S, Iwakiri Y, et al. Immunological mechanisms and emerging therapeutic targets in alcohol-associated liver disease[J]. Cell Mol Immunol, 2025,22(10): 1191-1204. DOI: 10.1038/s41423-025-01291-w.


[41] Negrin KA, Roth Flach RJ, DiStefano MT, et al. IL-1 signaling in obesity-induced hepatic lipogenesis and steatosis[J]. PLOS One, 2014, 9(9):e107265. DOI: 10.1371/journal.pone.0107265.


[42] Feng DC, Hwang S, Guilot A, et al. Inflammation in alco‐hol-associated hepatitis: pathogenesis and therapeutic targets[J]. Cell Mol Gastroenterol Hepatol, 2024, 18(3):101352.DOI: 10.1016/j.jcmgh.2024.04.009.


[43] Wieser V, Adolph TE, Enrich B, et al. Reversal of murine alcoholic steatohepatitis by pepducin-based functional blockade of interleukin-8 receptors[J]. Gut, 2017, 66(5):931-938. DOI: 10.1136/gutjnl-2015-310344.


[44] Mills KHG. IL-17 and IL-17-producing cells in protection versus pathology[J]. Nat Rev Immunol, 2023, 23(1): 38-54.DOI: 10.1038/s41577-022-00746-9.


[45] Diaz LA, Morris S, Dave S, et al. Clinical trial to assess the safety and tolerability of anti-IL 23 monoclonal antibody guselkumab in patients with alcohol-associated liver disease[J]. Aliment Pharmacol Ther, 2025, 61(7): 1141-1151. DOI:10.1111/apt.70026.


[46] Scarlata GGM, Colaci C, Scarcella M, et al. The role of cytokines in the pathogenesis and treatment of alcoholic liver disease[J].Diseases, 2024, 12(4):69. DOI: 10.3390/diseases12040069.


[47] Byun JS, Suh YG, Yi HS, et al. Activation of toll-like receptor 3 attenuates alcoholic liver injury by stimulating kupffer cells and stellate cells to produce interleukin-10 in mice[J]. J Hepatol,2013, 58(2): 342-349. DOI: 10.1016/j.jhep.2012.09.016.


[48] Mishra B, Bachu M, Yuan R, et al. IL-10 targets IRF transcription factors to suppress IFN and inflammatory response genes by epigenetic mechanisms[J]. Nat Immunol,2025, 26(5): 748-759. DOI: 10.1038/s41590-025-02137-3.


[49] Ki SH, Park O, Zheng M, et al. Interleukin-22 treatment ameliorates alcoholic liver injury in a murine model of chronic-binge ethanol feeding: role of signal transducer and

activator of transcription 3[J]. Hepatology, 2010, 52(4):1291-1300. DOI: 10.1002/hep.23837.


[50] Szabo G. Gut-liver axis in alcoholic liver disease[J].Gastroenterology, 2015, 148(1):30-36.DOI:10.1053/j.gastro.2014.10.042.


[51] Shen H, Zhou L, Zhang H, et al. Dietary fiber alleviates alcoholic liver injury via Bacteroides acidifaciens and subsequent ammonia detoxification[J]. Cell Host Microbe,2024, 32(8):1331-1346.e6. DOI: 10.1016/j.chom.2024.06.008.


[52] Yang AM, Inamine T, Hochrath K, et al. Intestinal fungi contribute to development of alcoholic liver disease[J]. J Clin Invest, 2017, 127(7): 2829-2841. DOI: 10.1172/JCI90562.


[53] Zeng S, Rosati E, Saggau C, et al. Candida albicans-specific Th17 cell-mediated response contributes to alcohol-associated liver disease[J]. Cell Host Microbe, 2023, 31(3):389-404. e7.DOI: 10.1016/j.chom.2023.02.001.


[54] Parker R, Kim SJ, Gao B. Alcohol, adipose tissue and liver disease: mechanistic links and clinical considerations[J]. Nat Rev Gastroenterol Hepatol, 2018, 15(1): 51-59. DOI: 10.1038/nrgastro.2017.116.


[55] Yeop Han C, Kargi AY, Omer M, et al. Differential effect of saturated and unsaturated free fatty acids on the generation of monocyte adhesion and chemotactic factors by adipocytes:dissociation of adipocyte hypertrophy from inflammation[J].Diabetes, 2010, 59(2): 386-396. DOI: 10.2337/db09-0925.


[56] Xu H, Zhao Q, Song N, et al. AdipoR1/AdipoR2 dual agonist recovers nonalcoholic steatohepatitis and related fibrosis via endoplasmic reticulum-mitochondria axis[J]. Nat Commun,2020, 11(1): 5807. DOI: 10.1038/s41467-020-19668-y.


[57] Leclercq IA, Farrell GC, Schriemer R, et al. Leptin is essential for the hepatic fibrogenic response to chronic liver injury[J]. J Hepatol, 2002, 37(2): 206-213. DOI: 10.1016/s0168-8278(02)00102-2.


[58] Temko JE, Bouhlal S, Farokhnia M, et al. The microbiota, the gut and the brain in eating and alcohol use disorders:a "ménage à trois"?[J]. Alcohol Alcohol, 2017, 52(4): 403-413.DOI: 10.1093/alcalc/agx024.


[59] Wang H, Yu M, Ochani M, et al. Nicotinic acetylcholine receptor alpha7 subunit is an essential regulator of inflammation[J].Nature, 2003, 421(6921): 384-388. DOI: 10.1038/nature01339.


[60] Miller BM, Oderberg IM, Goessling W. Hepatic nervous system in development, regeneration, and disease[J].Hepatology, 2021, 74(6): 3513-3522. DOI: 10.1002/hep.32055.


[61] 高晓琴, 周丹, 王珊, 等 . 肠道微生物群-肠-肝-脑轴在肝硬化相关神经精神疾病中的作用[J]. 中国肝脏病杂志(电子版),2025, 17(3): 28-33. DOI: 10.3969/j.issn.1674-7380.2025.03.004.


[62] Gao B, Xiang X. Interleukin-22 from bench to bedside: a promising drug for epithelial repair[J]. Cell Mol Immunol,2019, 16(7): 666-667. DOI: 10.1038/s41423-018-0055-6.


[63] Tang KY, Lickliter J, Huang ZH, et al. Safety, pharmacokinetics,and biomarkers of F-652, a recombinant human interleukin-22 dimer, in healthy subjects[J]. Cell Mol Immunol, 2019, 16(5):473-482. DOI: 10.1038/s41423-018-0029-8.


[64] Hendrikx T, Duan Y, Wang Y, et al. Bacteria engineered to produce IL-22 in intestine induce expression of REG3G to reduce ethanol-induced liver disease in mice[J]. Gut, 2019,68(8):1504-1515. DOI: 10.1136/gutjnl-2018-317232.


[65] Seidman JS, Troutman TD, Sakai M, et al. Niche-specific reprogramming of epigenetic landscapes drives myeloid cell diversity in nonalcoholic steatohepatitis[J]. Immunity, 2020,52(6): 1057-1074.e7. DOI: 10.1016/j.immuni.2020.04.001.


[66] Park JK, Shao M, Kim MY, et al. An endoplasmic reticulum protein, nogo-B, facilitates alcoholic liver disease through regulation of kupffer cell polarization[J]. Hepatology, 2017,65(5):1721-1734. DOI: 10.1002/hep.29051.


[67] Gu Z, Meng S, Yao B, et al. Bifidobacterium bifidum-derived nanoparticles attenuate alcoholic liver disease via enhanced hepatic phagocytosis and gastrointestinal homeostasis[J]. Nat Commun, 2026, 1-60. DOI: 10.1038/s41467-026-72211-3.


[68] Anstee QM, Neuschwander-Tetri BA, Wai-Sun Wong V, et al.Cenicriviroc lacked efficacy to treat liver fibrosis in nonalcoholic steatohepatitis: AURORA phase Ⅲ randomized study[J]. Clin Gastroenterol Hepatol Off Clin Pract J Am Gastroenterol Assoc, 2024, 22(1):124-134.e1. DOI: 10.1016/j.cgh.2023.04.003.


[69] Nagesh PT, Cho Y, Zhuang Y, et al. In vivo bruton's tyrosine kinase inhibition attenuates alcohol-associated liver disease by regulating CD84-mediated granulopoiesis[J]. Sci Transl Med,2024, 16(759): eadg1915. DOI: 10.1126/scitranslmed.adg1915.


[70] Xu MJ, Zhou Z, Parker R, et al. Targeting inflammation for the treatment of alcoholic liver disease[J]. Pharmacol Ther,2017, 180: 77-89. DOI: 10.1016/j.pharmthera.2017.06.007.


[71] Duan Y, Llorente C, Lang S, et al. Bacteriophage targeting of gut bacterium attenuates alcoholic liver disease[J]. Nature,2019, 575(7783): 505-511. DOI: 10.1038/s41586-019-1742-x.


[72] Nguyen-Khac E, Thevenot T, Piquet MA, et al.Glucocorticoids plus N-acetylcysteine in severe alcoholic hepatitis[J]. N Engl J Med, 2011, 365(19): 1781-1789. DOI:10.1056/NEJMoa1101214.


[73] Ma J, Guillot A, Yang Z, et al. Distinct histopathological phenotypes of severe alcoholic hepatitis suggest different mechanisms driving liver injury and failure[J]. J Clin Invest,2022, 132(14): e157780. DOI: 10.1172/JCI157780.


[74] Engelmann C, Habtesion A, Hassan M, et al. Combination of G-CSF and a TLR4 inhibitor reduce inflammation and promote regeneration in a mouse model of ACLF[J]. J Hepatol, 2022,77(5):1325-1338. DOI: 10.1016/j.jhep.2022.07.006.


来源:中华肝脏病杂志



医脉通是专业的在线医生平台,“感知世界医学脉搏,助力中国临床决策”是平台的使命。医脉通旗下拥有「临床指南」「用药参考」「医学文献王」「医知源」「e研通」「e脉播」等系列产品,全面满足医学工作者临床决策、获取新知及提升科研效率等方面的需求。


本平台旨在为医疗卫生专业人士传递更多医学信息。本平台发布的内容,不能以任何方式取代专业的医疗指导,也不应被视为诊疗建议。如该等信息被用于了解医学信息以外的目的,本平台不承担相关责任。本平台对发布的内容,并不代表同意其描述和观点。若涉及版权问题,烦请权利人与我们联系,我们将尽快处理。


图片

(本网站所有内容,凡注明来源为"医脉通",版权均归医脉通所有,未经授权,任何媒体、网站或个人不得转载,否则将追究法律责任,授权转载时须注明"来源:医脉通"。本网注明来源为其他媒体的内容为转载,转载仅作观点分享,版权归原作者所有,如有侵犯版权,请及时联系我们。)
2
收藏
添加表情
全部评论
我要投稿
发表评论
扫码分享

微信扫码分享

回到顶部