
引言
目前,抗体偶联药物(ADC)在

ADC药物的作用机制及临床疗效
ADC由单克隆抗体、化学连接子以及细胞毒性载荷三个关键部分构成。该类药物的抗体部分可特异性识别并结合肿瘤细胞表面的靶标抗原,ADC与靶抗原结合后,通过内吞作用进入细胞,形成早期内体1。随后,大部分内体会与溶酶体融合,ADC在溶酶体内被降解,从而释放出细胞毒性有效载荷1。这些释放出的有效载荷可进一步诱导肿瘤细胞凋亡,并借助“旁观者效应”扩散至邻近的肿瘤细胞,扩大杀伤范围1。
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T-DM1在HER2阳性乳腺癌中展现出较好的抗肿瘤疗效。EMILIA研究2对比了T-DM1与
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T-DXd在HER2阳性晚期乳腺癌和HER2低表达乳腺癌中均展现出较好的抗肿瘤疗效。DESTINY-Breast03研究4对比了T-DXd和T-DM1二线治疗HER2阳性晚期乳腺癌的疗效和安全性,结果显示,T-DXd组的中位PFS较T-DM1组显著延长(28.8个月 vs 6.8个月,HR=0.33,p<0.000001)。DESTINY-Breast04研究5旨在比较T-DXd与研究者选择的化疗(TPC)在既往接受过化疗的HER2低表达晚期乳腺癌患者中的疗效和安全性,结果显示,在HR+患者中,T-DXd组的中位PFS(10.1个月 vs 5.4个月,HR=0.51,P<0.0001)和中位OS(23.9个月 vs 17.5个月,HR=0.64;P=0.003)均较TPC组显著延长。
► SYD985
SYD985同样在HER2阳性晚期乳腺癌和HER2低表达乳腺癌中展现出良好的治疗潜力。TULIP研究6比较了SYD985与化疗在既往接受过抗HER2治疗的HER2阳性晚期乳腺癌患者中的疗效和安全性,研究显示,SYD985治疗组的中位PFS为7.0个月,显著优于化疗组的4.9个月(HR=0.64,p=0.002)。一项I期研究的乳腺癌扩展队列结果显示,28%接受SYD985治疗的HR+/HER2低表达患者达到部分缓解(PR);40%的HR-/HER2低表达患者达到PR7。
► ARX788
ACE-Breast-02研究8对比了ARX788与拉帕替尼联合卡培他滨(LC)在既往接受过曲妥珠单抗治疗的HER2阳性晚期乳腺癌患者中的疗效与安全性,结果显示,ARX788组的中位PFS为11.3个月,显著优于LC组的8.2个月(HR=0.64,p=0.0006)。
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一项I/Ib期临床研究显示,RC48在HER2阳性和HER2低表达晚期乳腺癌中均表现出良好的疗效,RC48治疗HER2阳性晚期乳腺癌患者的客观缓解率(ORR)为42.9%,中位PFS为5.7个月;在HER2低表达晚期乳腺癌患者中,RC48治疗的ORR为33.3%,中位PFS为5.1个月9。
► 博度曲妥珠单抗(A166)
KL166-Ⅲ-06研究10对比了A166与T-DM1在既往接受过曲妥珠单抗和紫杉类治疗的HER2阳性晚期乳腺癌患者中的疗效和安全性,结果显示,A166组的中位PFS较T-DM1组显著延长(11.1个月 vs 4.4个月;HR 0.39,p<0.0001)。
► SHR-A1811
HORIZON-Breast 01研究11对比了SHR-A1811与
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TROPiCS-02研究12评估了SG在内分泌治疗耐药、HR+/HER2-晚期乳腺癌患者中的疗效,患者既往接受过至少1种内分泌治疗与CDK4/6抑制剂治疗以及接受过二至四线晚期化疗。结果显示,与化疗相比,SG显著延长了患者的中位PFS(5.5个月 vs 4.0个月,HR=0.66,P=0.0003)和中位OS(14.4个月 vs 11.2个月,HR=0.79,P=0.02)。
► 德达博妥单抗(Dato-DXd)
TROPION-Breast01研究13比较了Dato-DXd与化疗在内分泌治疗失败且接受过一、二线化疗的HR+/HER2-晚期乳腺癌患者中的疗效。结果显示,与化疗相比,Dato-DXd组显著提高了患者的中位PFS(6.9个月 vs 4.9个月,HR=0.63,P<0.0001)。
► 芦康沙妥珠单抗(SKB264)
OPTITROP-BREAST01研究14评估了SKB264对比标准化疗在既往接受过至少2线系统治疗(含至少1线针对转移性阶段)的局部复发或转移性三阴性乳腺癌(TNBC)患者中的疗效。结果显示,SKB264组的中位PFS为6.7个月,显著优于化疗组的2.5个月(HR=0.32,P<0.00001)。

ADC的耐药机制
ADC的耐药机制可归纳为抗体介导的耐药、细胞内化与转运功能异常、溶酶体功能紊乱及有效载荷相关耐药四类1。
► 抗体介导的耐药
靶点表达下调是导致抗原-抗体结合减弱的主要机制之一,例如一项II期临床试验显示,较高的HER2表达水平与T-DM1更好的疗效相关1。此外,多个研究在T-DM1耐药细胞系中均观察到HER2表达降低及其与抗体结合能力下降,提示HER2缺失是T-DM1耐药的重要机制之一1。
► 细胞内化与转运功能异常
内吞功能障碍是ADC耐药的另一关键机制,多种蛋白参与ADC的细胞内化过程,例如内吞蛋白A2作为支架蛋白参与网格蛋白非依赖性内吞途径,其在HER2阳性乳腺癌模型中表达下调会导致HER2内吞减少,从而降低对T-DM1的治疗反应1。然而,小窝蛋白介导的内吞在T-DM1耐药中的作用尚存争议,可能与特定细胞系中靶抗原的主要内吞途径有关。此外,ADC在体内的药代动力学分布特征也可能影响耐药性的产生1。
► 溶酶体功能紊乱
ADC的溶酶体降解依赖于酸性溶酶体环境及活性溶酶体水解酶,有研究在一株T-DM1耐药的乳腺癌细胞系中,观察到溶酶体碱化及溶酶体蛋白酶活性下降1。细胞毒性有效载荷必须穿过溶酶体膜才能发挥杀伤作用,而对于负载膜不透性有效载荷的ADC而言,其有效载荷的释放需要转运蛋白参与1。SLC46A3是一种溶酶体转运蛋白,有研究发现,SLC46A3的缺失会导致T-DM1耐药1。
► 有效载荷相关耐药
有效载荷是ADC发挥抗肿瘤活性的关键组分。肿瘤细胞可通过多种途径对有效载荷产生耐药,例如上调药物外排泵、干扰药物沉积,以及改变有效载荷的作用靶点以逃避其细胞毒性1。
值得注意的是,HER2阳性乳腺癌中的ADC耐药机制具有特异性,这主要源于HER2受体的独特生物学特性,包括HER2结合功能受损、HER2表达异质性、下游信号通路失调及HER2蛋白稳定性下降这四类1。
► HER2结合功能受损
单克隆抗体与HER2的结合受多种因素影响1。HER2胞外域脱落会生成可溶性HER2截短片段,同时留下95kDa的细胞内结构域p95HER2,而有研究显示,p95HER2高水平表达可能与ADC耐药相关1。
► HER2表达异质性
当面对HER2异质性表达的肿瘤时,T-DM1显示出有限疗效1。KRISTINE试验显示,存在HER2瘤内异质性的患者均未对T-DM1治疗产生应答。一项早期乳腺癌II期试验进一步证实,HER2异质性与T-DM1耐药相关,其中HER2非扩增细胞的比例是关键影响因素。此外,HER2异质性与17号
► 下游信号通路失调
PI3K/AKT/mTOR信号通路是HER2下游的关键通路,与肿瘤进展密切相关1。该通路上调是抗HER2治疗的已知耐药机制。此外,由于其他酪氨酸激酶与HER2共享下游信号分子,它们的异常也会导致T‐DM1耐药1。
► HER2蛋白稳定性下降
HER2的膜稳定性与信号转导功能与热

ADC耐药的应对策略
为克服耐药,可采用可裂解连接子、提高药物抗体比率(DAR)、筛选更强效的细胞毒性载荷以增强ADC的疗效。除优化连接子与偶联技术外,抗体工程对ADC的研发也至关重要1。例如,双特异性抗体能增强靶点结合能力、促进HER2受体内化并加速溶酶体降解,为克服耐药提供了新方向1。此外,增强抗肿瘤免疫是提升ADC疗效及克服耐药性的另一潜在途径1。例如,通过单克隆抗体工程技术可强化Fc介导的免疫反应1。将ADC与其他作用机制不同且毒性重叠最小的靶向疗法联合使用,似乎是克服或预防耐药性的有效途径;而将ADC与免疫疗法相结合,可增强抗肿瘤免疫并带来持久的临床获益1。最后,除了在出现耐药后换用新药或采用联合方案外,开发预测性生物标志物有助于在治疗前评估患者对ADC的敏感性1。

总结
ADC药物已在乳腺癌治疗中展现出卓越疗效,但值得关注的是,临床中逐渐显现的ADC耐药问题,仍是当前抗乳腺癌治疗亟待突破的关键瓶颈1。深入理解ADC的耐药机制对于优化新药研发及建立ADC治疗预测性生物标志物体系具有重要意义。要从根本上破解耐药困局,仍需开展更多系统性、深层次的研究探索1。当前,ADC研发应聚焦于靶点创新、载荷与连接子的精准优化,以及新型偶联技术的迭代突破,以期全面克服临床应用局限,为乳腺癌患者带来更持久、更精准的生存获益1。
审批编号:CN-174665
有效期至:2026/12/12
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